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            免疫組化IHC實(shí)驗(yàn)經(jīng)驗(yàn)總結(jié)

            發(fā)布時(shí)間: 2022-03-15  點(diǎn)擊次數(shù): 1919次

            1、免疫組化實(shí)驗(yàn)所用的組織和細(xì)胞標(biāo)本有哪些?

            實(shí)驗(yàn)所用主要為組織標(biāo)本和細(xì)胞標(biāo)本兩大類,前者包括石蠟切片(病理大片和組織芯片)和冰凍切片,后者包括組織印片、細(xì)胞爬片和細(xì)胞涂片。其中石蠟切片是制作組織標(biāo)本最為常用、最基本的方法,對(duì)于組織形態(tài)保存好,且能作連續(xù)切片,有利于各種染色對(duì)照觀察;還能長期存檔,供回顧性研究;石蠟切片制作過程對(duì)組織內(nèi)抗原暴露有一定的影響,但可進(jìn)行抗原修復(fù),是免疫組化中最佳的組織標(biāo)本制作方法。


            2、石蠟切片為什么要做抗原修復(fù)?有哪些方法?

            石蠟切片標(biāo)本均用甲醛固定,使得細(xì)胞內(nèi)抗原形成醛鍵、羧甲鍵而被封閉了部分抗原決定簇,同時(shí)蛋白之間發(fā)生交聯(lián)而使抗原決定簇隱蔽。所以要求在進(jìn)行IHC染色時(shí),需要*行抗原修復(fù)或暴露,即將固定時(shí)分子之間所形成的交聯(lián)破壞,而恢復(fù)抗原的原有空間形態(tài)。常用的抗原修復(fù)方法有微波修復(fù)法,高壓加熱法,酶消化法,水煮加熱法等,常用的修復(fù)液是pH6.0的0.01 mol/L的檸檬酸鹽緩沖液。



            3、免疫組化常用的染色方法有哪些?

            根據(jù)標(biāo)記物的不同分為免疫熒光法,免疫酶標(biāo)法,親和組織化學(xué)法,后者是以一種物質(zhì)對(duì)某種組織成分具有高度親合力為基礎(chǔ)的檢測(cè)方法。這種方法敏感性更高,有利于微量抗原(抗體)在細(xì)胞或亞細(xì)胞水平的定位,其中生物素——抗生物素染色法最為常用


            4、石蠟切片在染色過程中出現(xiàn)脫片現(xiàn)象

            1)烤片時(shí)間不夠,或溫度不夠,可以延長烤片時(shí)間和提高烤片溫度; 

            2)用含有多聚賴氨酸的玻片,可以購買到或這自己做;

            3)有些組織本身就容易掉片,如骨組織等,操作時(shí)沖PBS不要直接沖到組織上,沖到組織上方,讓它流下沖洗組織; 

            4)用高溫修復(fù)時(shí),溫度驟冷也可能引起。 


            5、邊緣效應(yīng)

            1)組織邊緣與玻片粘貼不牢,邊緣組織松脫漂浮在液體中,每次清洗不易將組織下面試劑洗盡所致. 解決辦法:制備優(yōu)質(zhì)的膠片(APES或多聚賴氨酸),切出盡量薄的組織切片,不厚于4微米,組織的前期處理應(yīng)規(guī)范,盡量避免選用壞死較多的組織;

            2)切片上滴加的試劑未充分覆蓋組織,邊緣的試劑容易首先變干,濃度較中心組織高而致染色深。解決辦法:試劑要充分覆蓋組織,應(yīng)超出組織邊緣2mm。用組化筆畫圈時(shí),為了避免油劑的影響,畫圈應(yīng)距組織邊緣3-4mm。

             

            6、產(chǎn)生組織切片非特異性染色

            1)抗體孵育時(shí)間過長、抗體濃度高易增加背景著色。這可通過縮短一抗/二抗孵育時(shí)間、稀釋抗體來控制。這是最重要的一條; 

            2)一抗用多克隆抗體易出現(xiàn)非特異性著色,建議試用單克隆抗體看看; 

            3)內(nèi)源性過氧化物酶和生物素在肝臟、腎臟等組織含量很高(含血細(xì)胞多的組織),需要通過延長滅活時(shí)間和增加滅活劑濃度來降低背景染色; 

            4)非特異性組分與抗體結(jié)合,這需要通過延長二抗來源的動(dòng)物免疫血清封閉時(shí)間和適當(dāng)增加濃度來加強(qiáng)封閉效果; 

            5)DAB孵育時(shí)間過長或濃度過高; 

            6)PBS沖洗不充分,殘留抗體結(jié)果增強(qiáng)著色,在一抗、二抗或SP孵育之后的浸洗尤為重要; 

            7)標(biāo)本染色過程中經(jīng)常出現(xiàn)干片,這容易增強(qiáng)非特異性著色。

             

            7、免疫組化染色呈陰性結(jié)果

            1)抗體濃度和質(zhì)量問題以及抗體來源選擇錯(cuò)誤;   

            2)抗原修復(fù)不全,對(duì)于甲醛固定的組織必須用充分抗原修復(fù)來打開抗原表位,以利于與抗體結(jié)合;建議微波修復(fù)用高火4次*6min試試。有人做過實(shí)驗(yàn),這是最佳的時(shí)間和次數(shù)。若不行,還可高壓修復(fù); 

            3)組織切片本身這種抗原含量低;

            4)血清封閉時(shí)間過長;

            5)DAB孵育時(shí)間過短;

            6)細(xì)胞通透不全,抗體未能充分進(jìn)入胞內(nèi)參與反應(yīng);

            7)開始做免疫組化,我建議你一定要首先做個(gè)陽性對(duì)照片,排除抗體等外的方法問題。

             

            8、背景

            1)考慮一抗?jié)舛雀撸?/p>

            2)然后調(diào)整DAB孵育時(shí)間;

            3)也要考慮血清封閉時(shí)間是否過短;

            4)適當(dāng)增加抗體孵育后的浸洗次數(shù)和延長浸洗時(shí)間等。



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