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    如何提高蛋白質免疫印跡實驗(Western Blot)的成功率?

    發布時間: 2022-01-05  點擊次數: 3198次

    近些年來,蛋白質組學研究是生物領域比較熱門和研究廣泛的方向。而Western Blot實驗是研究蛋白組學的基本實驗操作。但是一個成功的Western Blot實驗結果需要注意很多細節。

    Western Blot即蛋白質免疫印跡實驗,利用抗原抗體特異性結合來檢測目的蛋白的表達量。蛋白質印跡法是由瑞士*弗雷德里希生物研究所(Friedrich Miescher Institute)的Harry Towbin1979年提出的。在尼爾·伯奈特(Neal Burnette)于1981年所著的《分析生物化學》(Analytical Biochemistry)中第一次被稱為Western Blot。蛋白免疫印跡(Western Blot)是將電泳分離后的細胞或組織中的蛋白質從凝膠轉移到固相支持物NC膜或PVDF膜上,然后用特異性抗體檢測某特定抗原的一種蛋白質檢測技術,現已廣泛應用于基因在蛋白水平的表達研究、抗體活性檢測和疾病早期診斷等多個方面。

    圖片

    下面詳細介紹每一步的操作:

    一、樣品的制備

    樣本來源一般分為細胞和組織,常用的裂解液為RIPA(強)裂解液,需要加入適量的蛋白酶抑制劑。根據所收集的細胞沉淀多少或組織塊大小,加入適量的裂解液。根據說明書,冰上裂解10min30min,定時進行渦旋震蕩。用BCA試劑盒進行蛋白定量,加入Loading Buffer99℃的金屬浴上煮樣10min。

    *加入的Loading Buffer目的

    主要成分

    主要功能

    SDS

    使蛋白質變性并帶上負電荷

    甘油

    增加樣品密度,使樣品沉降

    溴酚藍

    離子型染料,可觀察蛋白的遷移

    DTT

    減少二硫鍵的形成

    二、凝膠電泳

    * SDS凝膠配置原則:

      先配置分離膠,再配置濃縮膠;

      分子量越高,分離膠濃度越低;

      根據上樣量選擇對應的玻璃板和梳子。

      配膠成分表:


    分離膠15%

    分離膠12%

    分離膠10%

    分離膠8%

    濃縮膠5%

    總體積

    10ml

    10ml

    10ml

    10ml

    5ml

    30%丙烯酰胺(29:1

    5ml

    4ml

    3.3ml

    2.7ml

    0.83ml

    4XSDS-PAGE濃縮膠

    0

    0

    0

    0

    1.25ml

    4XSDS-PAGE分離膠

    2.5ml

    2.5ml

    2.5ml

    2.5ml

    0

    10%過硫酸銨

    40ul

    40ul

    40ul

    40ul

    30ul

    TEMED

    4ul

    4ul

    4ul

    4ul

    3ul

    ddH2O

    2.4ml

    3.4ml

    4.1ml

    4.7ml

    2.84ml

    最佳分離范圍

    10-40KD

    12-60KD

    20-80KD

    30-90KD

    ——

    配膠注意事項:

      (1)清洗玻璃板:可以先用海綿擦清洗玻璃板,在用去離子水潤洗一次,可以放置于烘箱或通風廚中晾干。

      (2)按照配膠表進行配置,充分混勻后在玻璃板中灌膠。

      (3)加水或者醇類液封,速度要慢,防止將分離膠沖不勻或變形。

    電泳

    采用SDS-PAGE電泳,每孔上樣量可為20-50ng。在適當空內加入marker。先用80V電壓使樣品進行充分濃縮,到達分離膠后調為120V,當溴酚藍要跑出即可終止電泳,進行轉膜。

    轉膜

    一般分為PVDF膜和NC膜,PVDF膜價格較貴,結合能力較強;NC膜價格便宜,結合能力較PVDF膜差,不能重復使用。

    PVDF膜是疏水性的,膜孔徑有大有小,隨著膜孔徑的不斷減小,膜對低分子量的蛋白結合就越牢固。大于20 kDa的蛋白選用0.45 um的膜,小于20 kDa的蛋白選用0.2 um的膜。PVDF膜在使用時需預處理,用甲醇激活15s,目的是活化膜上的正電基團,使其更容易與帶負電的蛋白結合(注意:不要有氣泡!不要將膠放干!原理:電場力作用條件下,PAGE膠中的帶負電荷的蛋白會發生定向遷移)。轉膜過程會產熱導致蛋白質降解,因此要使用冰袋散熱。目前市面上的快速轉膜液可以在常溫下400mA30min完成,方便快捷。

    注意事項:

      如果紙、膜比凝膠大就比較容易形成短路了,上下兩層慮紙也不能因過大而相互接觸,這樣同樣會短路,電流不會通過膠和慮紙。轉移前和轉移過程中看看電壓就行,正常的半干是慢慢變高的,最后結束時一般是開始的 1.5-3 倍都是正常的。一般 Buffer 和濾紙選的對就不會短路。

    轉膜方法:濕轉

    圖片

    轉膜后可以用麗春紅對膜進行染色,檢驗轉膜效率。

    封閉

    一般用5%的脫脂奶粉或者5%BSA進行封閉。對于磷酸化或者生物素標記的抗體只能用5%BSA。封閉是假為室溫1-2h。目的是去除非特異性結合。

    一抗孵育

    封閉后用TBST潤洗一次,然后根據蛋白的分子量大小進行裁膜,將對應的膜放入用一抗稀釋液配好的抗體中(具體稀釋比例要根據抗體說明書進行)。在4℃條件下置于搖床上孵育過夜。

    洗膜

    一抗孵育結束后,回收一抗,用TBST洗膜,每次7min,洗3次。

    二抗孵育

    洗膜結束后,加入配好的二抗(對應好一抗的種屬來源),室溫下置于搖床上1h,然后回收二抗,再次洗膜。

    顯影

    PVDF膜洗干凈后,滴加ECL發光液,孵育1min左右,可進行顯影。

    Western Blot可能遇到的問題:

    無顯色信號問題的原因分析:

    1.裂解產物中抗原含量不足;

    a. 抗原無表達或表達量過少

    b. 蛋白降解或上樣量不足

    c. 裂解產物制備失誤

    2.制膠濃度比例不合適;

    3.轉膜不*;

    4.一抗稀釋濃度過大;

    5.二抗與一抗不匹配;

    6.顯色系統靈敏度不足 

    非特意性雜帶出現的原因分析:

    1.封閉或清洗不*;

    2.一抗濃度過高;

    3.蛋白降解;

    4.抗體與非特異性蛋白交叉反應;

    5.蛋白間聚集作用,形成二聚體;

    6.轉移膜使用不當;

    7.操作過程中轉移膜干燥

    有一些污點的原因分析:

    1.轉膜有氣泡;

    2.孵育不均勻;

    3.脫脂奶粉沒有充分溶解


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